Gepato-gastroeterologik tadqiqotlar jurnali 2021, №2 MAXSUS SON 2-TOM

Subject of the article

ВЛИЯНИЕ ГЕНЕТИЧЕСКИХ ФАКТОРОВ НА ЕСТЕСТВЕННОЕ ТЕЧЕНИЕ ВИЧ-ИНФЕКЦИИ. (116-120)

Authors

Рюмин А. М., Собчак Д. М.

Institution

ФГБОУ ВО ПИМУ

Abstract

Количество ВИЧ-инфицированных пациентов в мире неуклонно растет. Несмотря на существование антиретровирусных препаратов, ВИЧ-инфекция остается неизлечимым заболеванием. Темпы прогрессирования болезни зависят от множества факторов, в том числе генетических. Целью данной работы быласистематизация выявленных в последние годы генетических факторов, влияющих на скорость прогрессирования болезни (скорость развития СПИДа, предрасположенность к развитию нейро- и нефропатий, нарушениям обмена углеводов и липидов и др.). Мы провели критический анализ 46 литературных источников (45 зарубежных публикаций в периодических изданиях и 1 отечественная) за период с 2015 по 2020 годы. По результатам обзора литературы можно сделать вывод об актуальности генетических факторов в развитии ВИЧ-инфекции. Однако очевидно, что разработка данной проблемы только начинается: исследования носят фрагментарный характер (изучаются отдельные гены в отдельных и не всегда больших этнических группах) и зачастую дают противоречивые результаты (большинство авторов связывают это с этническими особенностями обследуемых пациентов).

Key words

генетические полиморфизмы, вирус иммунодефицита человека, предикторы прогрессирования

Literature

1. UNAIDS Report on the Global AIDS Epidemic 2019. Available from: http://www.unaids.org/en/resources/fact-sheet 2. Ni J., Wang D., Wang S. The CCR5-Delta32 genetic polymorphism and HIV-1 infection susceptibility: a meta-analysis / Open Med. 2018; 13: 467-474 3. Naranbhai V., Carrington M. Host genetic variation and HIV disease: from mapping to mechanism / Immunogenetics. 2017; 69: 489–498, DOI 10.1007/s00251-017-1000-z 4. Jiménez-Sousa M.A. et al. VDR rs2228570 Polymorphism Is Related to Non-Progression to AIDS in Antiretroviral Therapy Naïve HIV-Infected Patients // J. Clin. Med. 2019; 8: 311 5. Pang X.-X. et al. Association of interleukin‐27 gene polymorphisms with susceptibility to HIV infection and disease progression //J Cell Mol Med. 2019; 23: 2410–2418. DOI: 10.1111/jcmm.14067 6. Estes, J.D., LeGrand, R., Petrovas, C. Visualizing the immune system: Providing key insights into HIV/SIV infections// Front. Immunol. 2018; 9: 423 7. Bartha I. et al. Estimating the respective contributions of human and viral genetic variation to HIV control // PLoS Comput Biol. 2017; 13: e1005339 8. Adland E. et al. Discordant impact of HLA on viral replicative capacity and disease progression in pediatric and adult HIV infection // PLoS Pathog. 2015; 11: e1004954 9. Angulo J.M.C., Cuesta T.A.C., Menezes E.P., Pedroso C., Brites C. A systematic review on the influence of HLA-B polymorphisms on HIV-1 mother-to-child-transmission //Bras J Infect Dis. 2019; 23(1): 53-59 10. Хаитов Р.М., Алексеев Л.П., Гудима Г.О., Кофиади И.А. Аллельные варианты генов человека, затрагивающие внутриклеточный жизненный цикл ВИЧ и регулирующие иммунный ответ на ВИЧ-инфекцию // Бюллетень сибирской медицины. 2019; 18(1): 119–130. DOI: 10.20538/1682-0363-2019-1-119–130 11. Xie W. et al. Genome-Wide Analyses Reveal Gene Influence on HIV Disease Progression and HIV-1C Acquisition in Southern Africa / AIDS Research And Human Retroviruses. 2017; 6: 597-609 12. Geraghty D.E., Thorball C.W., Fellay J., Thomas R. Effect of Fc Receptor Genetic Diversity on HIV-1 Disease Pathogenesis //Front. Immunol. 2019; 10: 970 13. Wachira D. Lihana R., Okoth V., Maiyo A., Khamadi S.A. Chemokine coreceptor-2 gene polymorphisms among HIV-1 infected individuals in Kenya // Dis Markers. 2015; 4: ID952067 14. Fu D.-H., Deng W.-J., Yang Z., Hong S., Ding Q.-L., Zhao Y., Chen J., Su D.-K. Association between polymorphisms in the interleukin-10 gene and susceptibility to human immunodeficiency virus-1 infection: A systematic review and meta-analysis // Medicine. 2020; 99: 48(e23069) 15. Kallas E. et al. Inluence of interleukin 10 polymorphisms -592 and -1082 to the HIV, HBV and HCV serostatus among introvenous drug users // Infect Genet Evol. 2015; 30: 175-180 16. Ramezani A. et al. Lack of Association between Interleukin-10 Gene Promoter Polymorphisms with HIV Susceptibility and Progression to AIDS // Iranian Journal of Pathology. 2015; 10(2): 141 – 148 17. Bonifim et al. Polymorphisms in the IFNγ, IL-10, and TGFβ Genes May Be Associated with HIV-1 Infection // Disease Markers. 2015; 2015: 248571 18. Singh S. Combination of low producer AA-genotypes in IFN-γ and IL-10 genes makes a high risk genetic variant for HIV disease progression // Cytokine. 2016; 77: 135-144 19. Garza R. et al. Heme oxygenase-1 promoter (GT)n polymorphism associates with HIV neurocognitive impairment //Neurol Neuroimmunol Neuroinflamm. 2020; 7: e710. DOI: 10.1212/NXI.0000000000000710 20. Heaton R.K., Franklin D.R. Jr., Deutsch R. et al. Neurocognitive change in the era of HIV combination antiretroviral therapy: the longitudinal CHARTER study. //Clin Infect Dis. 2015; 60: 473–480 21. Gill A.J., Kovacsics C.E., Vance P.J., Collman R.G., Kolson D.L. Induction of heme oxygenase-1 deficiency and associated glutamate-mediated neurotoxicity is a highly conserved HIV phenotype of chronic macrophage infection that is resistant to antiretroviral therapy// J Virol. 2015; 89: 10656–10667 22. Schipper H.M., Song W. A heme oxygenase-1 transducer model of degenerative and developmental brain disorders // Int J Mol Sci. 2015; 16: 5400–5419 23. Lee H., Choi Y.K. Regenerative effects of heme oxygenase metabolites on neuroinflammatory diseases//Int J Mol Sci. 2018; 20: E78 24. Gill A.J., Garza R., Ambegaokar S.S., Gelman B.B., Kolson D.L. Heme oxygenase-1 promoter region (GT)n polymorphism associates with increased neuroimmune activation and risk for encephalitis in HIV infection.// J Neuroinflammation. 2018; 15: 70 25. Wadley A.L., Mitchell D., Kamerman P.R. Resilience does not explain the dissociation between chronic pain and physical activity in South Africans living with HIV // Peer J. 2016; 4: e2464 26. Xu J. et al. Catechol-O-methyltransferase polymorphism Val158 Met is associated with distal neuropathic pain in HIV-associated sensory neuropathy // AIDS. 2019; 33(10): 1575–1582. DOI: 10.1097/QAD.0000000000002240 27. Fogo A.B., Lusco M.A., Najafian B., Alpers C.E. AJKD atlas of renal pathology: HIV-associated nephropathy (HIVAN) //Am J Kidney Dis. 2016; 68(2): 545–559 28. Kruzel-Davila E., Wasser W.G., Aviram S., Skorecki K. APOL1 nephropathy: from gene to mechanisms of kidney injury // Nephrol Dial Transplant. 2015; 10: 349-58. DOI: 10.1093/ndt/gfu391 29. Mikulak J. et al. Impact of APOL1 polymorphism and IL-1β priming in the entry and persistence of HIV-1 in human podocytes // Retrovirology. 2016; 13 30. Palau L. et al. HIV-associated nephropathy: links, risks and management // HIV/AIDS - Research and Palliative Care. 2018; 10: 73–81 31. Chen I., Ichinohe T. Response of host inflammasomes to viral infection // Trends Microbiol. 2015; 23: 55-63. DOI: 10.1016/j.tim.2014.09.007 32. Wadley A.L., Hendry L.M., Kamerman P.R., Chew C.S.N., Price P., Cherry C.L., Lombard Z. Role of TNF block genetic variants in HIV-associated sensory neuropathy in black Southern Africans // Eur. J. Hum. Genet.2015; 23: 363–368 33. Nunez-Torres R. et al. Fat mass and obesity-associated gene variations are related to fatty liver disease in HIV-infected patients / HIV Medicine. 2017; 18: 546-554